服務(wù)熱線
產(chǎn)品展示PRODUCTS
植物光合熱釋光測量系統(tǒng)
更新時間：2025-07-01
訪問次數(shù)：3436
植物光合熱釋光測量系統(tǒng)是針對研究PSII能量水平結(jié)構(gòu)而設(shè)計的。PSII反應(yīng)中心光誘導(dǎo)電荷分離導(dǎo)致儲存了吸收光能的激發(fā)電子對的累積。加熱誘導(dǎo)這些激發(fā)電子對的重組，從而引發(fā)光釋放，并在一定溫度范圍內(nèi)形成特異性熱釋光曲線。根據(jù)不同釋光曲線的形狀、峰位和峰值，可以研究分析關(guān)于特定激發(fā)電子對的能量穩(wěn)定性及PSII反應(yīng)中心功能等。
植物光合熱釋光測量系統(tǒng)
植物光合熱釋光測量系統(tǒng)是研究光合作用的強(qiáng)有力的工具，是研究PSII電子傳輸?shù)挠行结?，廣泛應(yīng)用于除草劑對PSII的受體效應(yīng)、QA與QB穩(wěn)定性、光合放氧復(fù)合物（OEC）穩(wěn)定性及PSII總體完整性等，還用于光合突變個體的篩選等。
是針對研究PSII能量水平結(jié)構(gòu)而設(shè)計的。PSII反應(yīng)中心光誘導(dǎo)電荷分離導(dǎo)致儲存了吸收光能的激發(fā)電子對的累積。加熱誘導(dǎo)這些激發(fā)電子對的重組，從而引發(fā)光釋放，并在一定溫度范圍內(nèi)形成特異性熱釋光曲線。根據(jù)不同釋光曲線的形狀、峰位和峰值，可以研究分析關(guān)于特定激發(fā)電子對的能量穩(wěn)定性及PSII反應(yīng)中心功能等。TL200系列熱釋光測量儀的測量范圍為-90°C到+190°C，使用范圍更寬，可以對低溫、高溫段熱釋光進(jìn)行研究。
應(yīng)用領(lǐng)域
- 光合機(jī)理研究——捕光色素復(fù)合體，PSII反應(yīng)中心，放氧復(fù)合物研究；PSII能級分析；原初反應(yīng)階段的內(nèi)在過程探測
- 植物脅迫生理的早期檢測與診斷
- 植物病蟲害相關(guān)研究
- 除草劑影響
- 對植物光合研究的完善補(bǔ)充
典型樣品
植物碎片
各種微藻
葉綠體懸浮液
類囊體懸浮液
工作原理
熱釋光(Thermoluminescence，縮寫TL)是晶體受到輻射照射后，會產(chǎn)生自由電子，這些電子被晶格缺陷俘獲而積攢起來，在加熱過程中以光形式釋放出來。其基本的實驗過程是將葉片快速冷凍到某一溫度，之后給葉片一個足夠強(qiáng)，但時間盡量短（一般<5µs）的單翻轉(zhuǎn)光（single turn-over ?ash），用于誘導(dǎo)每個PSII反映中心發(fā)生僅一次的電荷分離；然后逐漸升溫，同時測量葉片放出的熱釋光，繪制TL譜帶。
熱釋光研究中的一個主要工具是單次翻轉(zhuǎn)光閃，要求足夠強(qiáng)（光源強(qiáng)度高達(dá) 150 000 µmol(photons).m－2.s－1）和足夠短（典型 < 5 微秒）來誘導(dǎo)每一個PSII反應(yīng)中心發(fā)生一次，且僅一次的電荷分離。光閃的飽和效果可以通過QB段的強(qiáng)度來檢查，它應(yīng)該在*光閃后達(dá)到zui大，在2次光閃后不再增加。當(dāng)前許多實驗中使用的氙燈光閃具有明顯缺陷——一個長的持續(xù)發(fā)光，或者“閃光拖尾”，這會在某些PSII反應(yīng)中心中產(chǎn)生兩次的電荷分離（連擊）。雖然激光閃光能夠有效降低連擊，但不能消除。
TL200系列熱釋光測量儀使用能量足夠強(qiáng)的LED光源，所釋放5-10µs的方波脈沖能夠飽和所有的PSII反應(yīng)中心，其溫度控制單元可以在降溫后，再使樣品的溫度以0.1℃/sec到 2℃/sec的速率線性增加。不同的閃光序列及樣品處理能夠使樣品處于不同的能量狀態(tài)，不同的溫度下釋放的光能源自光合機(jī)構(gòu)的不同結(jié)構(gòu)。分析釋光曲線的形狀、峰位和峰值，可以研究分析關(guān)于特定激發(fā)電子對的能量穩(wěn)定性及PSII反應(yīng)中心功能等。
熱釋光與光合機(jī)構(gòu)間關(guān)系
TL200系列熱釋光測量儀三種型號的控溫方式與范圍
具體型號 | 控溫方式 | 控溫范圍 |
TL200/PMT標(biāo)準(zhǔn)版 | 水冷單元——控溫模塊 | -25 ℃ 到+70 ℃ |
TL300/HT高溫版 | 水冷單元——高溫控制模塊 | -25 ℃ 到+190 ℃ |
TL400/LT液氮版 | 水冷單元——液氮制冷單元——控溫模塊 | -90 ℃ 到+70 ℃ |
系統(tǒng)組成
TL200系列熱釋光測量系統(tǒng)由3部分組成：多功能控制單元、溫度調(diào)節(jié)器控制單元及測量室 。
多功能控制單元（Multipurpose Control Unit）根據(jù)用戶定義方案或熱發(fā)光向?qū)峁┑膶嶒灣绦騺韴?zhí)行實驗過程，有兩個輸入頻道，一個用于測量熱發(fā)光信號（TL信號），另一個用于測量溫度。 測量曲線以兩種格式顯示：時間/溫度和時間/TL信號，或溫度/TL信號。
溫度調(diào)節(jié)器控制單元（Thermoregulator Control Unit）可以在-90°C 到 +190°C范圍內(nèi)以0.1°C的精確度控制樣品的溫度。 系統(tǒng)前面板可以顯示實際的溫度，溫度調(diào)節(jié)可以通過手動或程序控制（軟件）來實現(xiàn)。有兩種工作模式：恒溫模式和溫度梯度模式，在恒溫模式下儀器將維持樣品在恒定的溫度，而在溫度梯度模式下，可以使樣品的溫度以0.1°C/sec到 2°C/sec的速率線性變化。
AC-88水冷單元可將系統(tǒng)溫度降低到4°C，包含一個電子控制的抽水泵和內(nèi)部可以儲水的制冷器，用于降低測量室的環(huán)境溫度。
CryoFab液氮罐通過管路連接到測量室，通過電子控制的低溫輸出閥可以將系統(tǒng)溫度控制在 -20°C 到 -90°C。
由TFPE單元控制的輔助加熱模塊可以將系統(tǒng)溫度加熱到+190°C。
測量室（Measuring Chamber）又包括四個關(guān)鍵組成部分：光源、 光電倍增器、A/D 轉(zhuǎn)換器、具有溫度控制器的樣品盤：
- 光源由8個超亮的發(fā)光二極管(λmax=630 nm)組成，發(fā)射的光閃強(qiáng)度高達(dá)150,000 µmol(photons). m－2.s－1以上，光閃持續(xù)時間zui長為150 µs（典型5-10us），光強(qiáng)和光閃持續(xù)時間通過軟件控制。
- 光電倍增器可以探測從300到900nm范圍的光量子，從而測量熱發(fā)光信號和緩發(fā)熒光。光電倍增器包括自己的電源。
- A/D轉(zhuǎn)換器用于光電倍增器的電流放大、軟件控制增益和數(shù)字化，放大器的時間反應(yīng)固定在50ms，以確定zui小取樣周期到100ms。
技術(shù)參數(shù)
- 溫度范圍：
TL200/PMT標(biāo)準(zhǔn)版：-25 ℃ 到+70 ℃
TL 300/HT高溫版：-25 ℃ 到+190 ℃
TL 400/LT液氮版：-90 ℃ 到+70 ℃
- 控溫模式：恒溫；線性變化（0.1ºC/sec - 2ºC/sec）
- 過熱保護(hù)：提供
環(huán)境光保護(hù)：提供 - 控制模式：手動（恒溫）；程序設(shè)定溫度曲線
- 樣品盤：直徑½英寸鍍金銅盤
- 測量樣品：藻類、藍(lán)細(xì)菌、葉綠體懸浮液，葉片碎片等
- 光源：波長lmax=625nm，光源強(qiáng)度高達(dá) 150 000 µmol(photons). m－2.s－1以上
- 探測系統(tǒng)：傳感器為可以通過軟件靈敏控制的光電倍增器，光譜響應(yīng)為300nm-900nm，zui小取樣周期100ms，時間響應(yīng)50ms，接通延遲100ms
- 控制：用戶可通過語言自定義程序控制儀器測量過程
- 通訊：USB
- 軟件：FluorWin 3.6
- 電源：90V-240V
操作軟件與實驗結(jié)果
典型應(yīng)用
上圖為源自擬南芥未冷凍葉片的熱釋光（M.Roman ，1998）。實心符號：對照（a）；空心符號：輕度脫水（b）。單閃（細(xì)線）產(chǎn)生75%的S2和25%的S1（只有S2和S3產(chǎn)生熱釋光，S1無），雙閃（粗線）25%的S2和75%的S3，3閃（點線）25%的S3。a、對照植物。單閃后，熱釋光B段與S2QB-相*（B2，見表1）且可以被單因子擬合得很好。2次閃光后，則需要3個因子，S2QB-（B1），S3QB-（B2）和一個剩余因子（未顯示）。b、適度脫水的植物。B段下調(diào)，S3比S2在更大程度上表明了類囊體腔內(nèi)一個暗穩(wěn)態(tài)的酸性pH。45攝氏度段（余輝）源自S2/3QB中心中熱誘導(dǎo)的從基質(zhì)還原劑向QB的電子傳遞，使它們發(fā)光：它的增加表明了一個強(qiáng)的同化勢能NADP+ATP（Ducruet 2003）。
產(chǎn)地：歐洲
參考文獻(xiàn)：（僅2011年發(fā)表的部分文獻(xiàn)，77篇中的14篇）
- Thermoluminescence. PV Sane, et al, 2012. Photosynthesis
- Analysis of S2QA-charge recombination with the Arrhenius, Eyring and Marcus theories. S Rantamäki, et al, 2011. Journal of Photochemistry and Photobiology B: Biology
- Manganese limitation induces changes in the activity and in the organization of photosynthetic complexes in the cyanobacterium Synechocystis sp. strain PCC 6803. E Salomon, et al, 2011. Plant physiology
- Inhibition of photosynthetic oxygen evolution and electron transfer from the quinone acceptor QA− to QB by iron deficiency. N Msilini, et al, 2011. Photosynthesis research
- Chlorophyll fluorescence emission as a reporter on cold tolerance in Arabidopsis thaliana accessions. A Mishra, et al. Plant Signaling & Behavior, 2011
- Characterization of photosystem II in transgenic tobacco plants with decreased iron superoxide dismutase. Y Zhang, et al, 2011. Biochimica et Biophysica Acta
- Two functional sites of phosphatidylglycerol for regulation of reaction of plastoquinone Q< sub> B</sub> in photosystem II. S Itoh, et al, 2011. Biochimica et Biophysica Acta
- Binding Stoichiometry and Affinity of the Manganese-Stabilizing Protein Affects Redox Reactions on the Oxidizing Side of Photosystem II. JL Roose, et al, 2011. Biochemistry
- Species-dependence of the redox potential of the primary quinone electron acceptor QA in photosystem II verified by spectroelectrochemistry. T Shibamoto, et al, 2010. FEBS letters
- Flavodiiron proteins in oxygenic photosynthetic organisms: photoprotection of photosystem II by Flv2 and Flv4 in Synechocystis sp. PCC 6803. P Zhang, et al, 2009. PloS one
- Comparative analysis of leaf‐type ferredoxin‐NADP+ oxidoreductase isoforms in Arabidopsis thaliana. M Lintala, et al, 2009. The Plant Journal
- Psb28 protein is involved in the biogenesis of the photosystem II inner antenna CP47 (PsbB) in the cyanobacterium Synechocystis sp. PCC 6803. M Dobáková, et al, 2009. Plant physiology
- Functional complementation of the Arabidopsis thaliana psbo1 mutant phenotype with an N-terminally His6-tagged PsbO-1 protein in photosystem II. H Liu, et al, 2009. Biochimica et Biophysica Acta
- Interaction of methylamine with extrinsic and intrinsic subunits of photosystem II. S Hamdani, et al, 2009. Biochimica et Biophysica Acta
- Investigation of the low-affinity oxidation site for exogenous electron donors in the Mn-depleted photosystem II complexes. VN Kurashov, et al, 2009. Biochimica et Biophysica Acta
- Changes in the photosynthetic reaction centre II in the diatom Phaeodactylum tricornutum result in non‐photochemical fluorescence quenching. D Eisenstadt, et al, 2008. Environmental Microbiology
- Characterization of photosystem II in salt-stressed cyanobacterial Spirulina platensis cells. H Gong, et al, 2008. Biochimica et Biophysica Acta
- The cyanobacterial homologue of HCF136/YCF48 is a component of an early photosystem II assembly complex and is important for both the efficient assembly and Repair of Photosystem II in Synechocystis sp. PCC 6803*. J Komenda, et al, 2008. Journal of Biological chemistry.
- Early detection of bean infection by Pseudomonas syringae in asymptomatic leaf areas using chlorophyll fluorescence imaging. L Rodríguez-Moreno, et al, 2008. Photosynthesis research
- Effects of heat stress on PSII photochemistry in a cyanobacterium Spirulina platensis. B Zhao, et al, 2008. Plant Science
- The effects of simultaneous RNAi suppression of PsbO and PsbP protein expression in photosystem II of Arabidopsis. X Yi, et al, 2008. Photosynthesis research
- Functional analysis of photosystem II in a PsbO-1-deficient mutant in Arabidopsis thaliana. H Liu, et al, 2007. Biochemistry
- Efficiency and role of loss processes in light‐driven water oxidation by PSII. M Grabolle, et al, 2007. Physiologia plantarum
- Changes of Photosystem II Electron Transport in the Chlorophyll‐deficient Oilseed Rape Mutant Studied by Chlorophyll Fluorescence and Thermoluminescence. JW Guo, et al, 2007. Journal of Integrative Plant Biology
- The exposed N-terminal tail of the D1 subunit is required for rapid D1 degradation during photosystem II repair in Synechocystis sp PCC 6803. J Komenda, et al, 2007. The Plant Cell
- The chlorophyll a fluorescence induction pattern in chloroplasts upon repetitive single turnover excitations: accumulation and function of QB-nonreducing centers. W Vredenberg, et al, 2006. Biochimica et Biophysica Acta
- The polyphasic chlorophyll a fluorescence rise measured under high intensity of exciting light. D Lazár , 2006. Functional Plant Biology
- The synechocystis sp PCC 6803 oxa1 homolog is essential for membrane integration of reaction center precursor protein pD1. F Ossenbühl, et al, 2006. The Plant Cell
- Sucrose and glycerol effects on photosystem II. KM Halverson, et al, 2003. Biophysical journal
- Copper-induced inhibition of photosynthesis: limiting steps of in vivo copper chlorophyll formation in Scenedesmus quadricauda. H Küpper, et al, 2003. Functional Plant Biology
- Heavy metal‐induced inhibition of photosynthesis: targets of in vivo heavy metal chlorophyll formation1. h küpper, et al, 2002. journal of Phycology
- Experimental and theoretical studies on the excess capacity of Photosystem II. R Kaňa, et al, 2002. Photosynthesis research
- Nitrogen deprivation strongly affects Photosystem II but not phycoerythrin level in the divinyl-chlorophyll b-containing cyanobacterium Prochlorococcus marinus. C Steglich, et al, 2001. Biochimica et Biophysica Acta
- Integrity and activity of photosystem 2 complexes isolated from the thermophilic cyanobacterium Synechococcus elongatus using various detergents. E Šetlíková, et al, 1999. Photosynthetica
- The PsbY protein is not essential for oxygenic photosynthesis in the cyanobacterium Synechocystis sp. PCC 6803. M Meetam, et al, 1999. Plant physiology
- Nonphotochemical reduction of the plastoquinone pool in sunflower leaves originates from chlororespiration. TS Feild, et al, 1998. Plant physiology